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Phitokos Ausilium MIAO

Mangime complementare per gatti - Aiuta a proteggere le vie urinarie
POLVERE - Peso netto 100 g

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Indicazioni:
Phitokos AUSILIUM MIAO, indicato come rimedio complementare nelle cistiti ed altre infezioni alle vie urinarie, è particolarmente efficace in caso di Escherichia coli, Klebsiella, Enterococcus faecalis, Streptococcus, Staphylococcus, Proteus, Pseudomonas e altri batteri fimbriati. Contrariamente a quanto succede con la terapia antibiotica, i batteri non vengono uccisi, ma eliminati in modo meccanico, trascinati all’esterno con il flusso delle urine. Questo permette di non danneggiare la flora batterica fisiologica, preziosa alleata della salute dell’animale. I batteri non percepiranno il d-mannosio come “nemico”, come avverrebbe ad esempio con l’antibiotico, e non faranno in tempo a mettere in atto mutazioni finalizzate ad eludere futuri attacchi, né a scambiare con altri batteri plasmidi contenenti geni codificanti per sviluppare resistenze agli antibiotici.

Phitokos AUSILIUM MIAO può essere assunto sia durante le fasi acute -in associazione alle terapie specifiche indicate dal veterinario curante- sia nelle forme ricorrenti o recidivanti -da solo o in associazione alle diete specifiche consigliate dal veterinario.

Phitokos AUSILIUM MIAO può essere utilizzato anche in fase di prevenzione e di mantenimento.

COMPOSIZIONE
Maltodestrina, Farina di fegato di maiale, d-Mannosio

ADDITIVI PER Kg:
Prodotti naturali botanicamente definiti: Morinda citrifolia L. extract mg 70.000

MECCANISMO DI AZIONE
Il d-Mannosio esplica la sua azione grazie all’affinità che presenta nei confronti delle fimbrie dei batteri, che satura inibendone la capacità adesiva. I batteri, non essendo più in grado di aderire all’epitelio, saranno espulsi con il flusso urinario.
Il d-Mannosio aiuta inoltre a ripristinare l’integrità tissutale, ricostituendo lo strato di GAG (glicosaminoglicani), componente essenziale della matrice extracellulare.
La Morinda citrifolia rafforza le difese immunitarie e assicura un’efficace azione antinfiammatoria, antidolorifica, lenitiva, antibatterica ed antimicotica.
Phitokos AUSILIUM MIAO può essere usato anche per lunghi periodi, non ha effetti collaterali, non interferisce con alcun tipo di farmaco, non dà rischi di sovradosaggio. Può essere assunto anche in gravidanza, in allattamento e da pazienti diabetici.

ISTRUZIONI PER L’USO
Miscelare la polvere alla consueta razione alimentare di cibo umido secondo il seguente dosaggio giornaliero:
• Fino a 10 Kg di peso: 2 misurini al giorno, in due somministrazioni, per un totale di g 3
• Oltre i 10 Kg di peso: 4 misurini al giorno, in due somministrazioni, per un totale di g 6
In caso di alimentazione esclusivamente secca inumidire leggermente l’alimento per consentire una buona adesività della polvere e la sua completa assunzione.

ISTRUZIONI PER L’USO
È consigliabile effettuare un ciclo di somministrazione di 10-15 giorni, eventualmente ripetibile a giudizio del Veterinario.

PRODOTTO SOLO PER USO VETERINARIO - TENERE FUORI DALLA PORTATA DEI BAMBINI CONSERVARE IN LUOGO ASCIUTTO ED AL RIPARO DALLA LUCE

BIBLIOGRAFIA
1. Urological Research Volume 11, Number 2, 97-102, DOI: 10.1007/BF00256954 Effect of D-mannose and D-glucose on Escherichia colibacteriuria in rats E. K. Michaels, J. S. Chmiel, B. J. Plotkin and A. J. Schaeffer - Abstract 2. Infect Immun. 1978 October; 22(1): 247-254 Copyright © 1978 American Society for Microbiology. Mannose Binding and Epithelial Cell Adherence of Escherichia coli. Itzhak Ofek and Edwin H. Beachey 1 Veterans Administration Hospital and the Departments of Microbiology and Medicine, University of Tennessee Center for the Health Sciences, Memphis, Tennessee 38104 - Abstract 3. 4th International Symposium, Perspectives in Clinical Microbiology and Infections”, Venice 2003 “Factors which influence colonization by uropathogenic bacteria “ 4. “Advances in microbial physiology”, Anthony H. Rose, Volume 28, accademic press inc 1987, pag 100 5. “Alternative medicine and spinal cord injury: beyond the banks of the mainstream”, Laurance Johnston, Demos Medical Publishing, Inc. 2006, pag 167 6. “Women’s Encyclopedia of Natural Medicine”, Tori Hudson, McGraw-Hill 2008, pag 70 7. “Review Carbohydrates as future anti-adhesion drugs for infectious diseases” Nathan Sharon Department of Biological Chemistry, The Weizmann Institute of Science, Rehovot 76100, Israel Received 21 November 2005; received in revised form 7 December 2005; accepted 7 December 2005 Available online 18 January 2006 8. “The Pervasive Effects of an Antibiotic on the Human Gut Microbiota, as Revealed by Deep 16S rRNA Sequencing” Les Dethlefsen1,2, Sue Huse3, Mitchell L. Sogin3, David A. Relman1,2,4* 1 Department of Microbiology and Immunology, Stanford University, Stanford, California, United States of America, 2 Department of Medicine, Stanford University, Stanford, California, United States of America, 3 Josephine Bay Paul Center for Comparative Molecular Biology and Evolution, Marine Biological Laboratory, Woods Hole, Massachusetts, United States of America, 4 Veterans Affairs Palo Alto Health Care System, Palo Alto, California, United States of America. DOI: 10.1002/cmdc.200900034 9. “Synthetic Multimeric Heptyl Mannosides as Potent Antiadhesives of Uropathogenic Escherichia coli” S_bastien G. Gouin,*[a] Adinda Wellens,[b, c] Julie Bouckaert,[b, c] and Jos_ Kovensky[a] 10. Scot C. Nelson. Morinda citrifolia (noni), April 2006. Species Profiles for Pacific Island Agroforestry 11. Wang MY et al. Morinda citrifolia (Noni): A literature review and recent advances in Noni research. Acta Pharmacol Sin 2002; 23 (12): 1127 -1141 12. Yanine Chan-Blancoa et al. Critical Review. The noni fruit (Morinda citrifolia L.): A review of agricultural research, nutritional and therapeutic properties. Journal of Food Composition and Analysis 19 (2006) 645–654 13. F. Firenzuoli. Fitoterapia. Guida all’uso clinico dell piante medicinali. Firenze, ottobre 2008. 14. American Journal of Gastroenterology, 2008; 103: 2406 15. Eden CS et al. Adhesion of Escherichia coli in urinary tract infection. Ciba Found Symp. 1981;80:161-87. 16. Zenk MH, El-Shagi H, Schulte U (1975). Anthraquinone production by cell suspension cultures of Morinda citrifolia. Planta Medica (Suppl) 27: 79-101. 17. Thomson RH (1971). Naturally Occurring Anthraquinones. Academic Press, New York. 18. Sang S, Wang M, He K, Liu G, Dong Z, Badmaev V, Zheng QY, Ghai G, Rosen RT, Ho C-T (2002). Chemical components in Noni fruits and leaves (Morinda citrifolia L.). In: Quality Management of Nutraceuticals. Ho C-T and Zheng QY (Eds.). ACS Symposium Series 803, American Chemical Society, Washington DC; pp. 135-150. 19. Hirazumi A (1997). Antitumor Studies of a Traditional Hawaiian Medicinal Plant, Morinda citrifolia (Noni), In Vitro and In Vivo. Ph.D. Thesis University of Hawaii, Honolulu, Hawaii. 20. Hirazumi A and Furusawa E (1999). An immunomodulatory polysaccharide-rich substance from the fruit juice of Morinda citrifolia (Noni) with antitumor activity. Phytother Res 13: 380-387. 21. Hirazumi A, Furusawa E, Chou SC, Hokama Y (1994). Anti-cancer activity of Morinda citrifolia (Noni) on intraperitoneally inplanted lewis lung carcinoma in syngeneic mice. Proc West Pharmacol Soc 37: 145-146. 22. Hirazumi A, Furusawa E, Chou SC, Hokama Y (1996). Immunomodulation contributes to the anticancer activity of Morinda citrifolia (Noni) fruit juice. Proc West Pharmacol Soc 39: 7-9. 23. Dalton T, et al. An in vivo polymicrobial biofilm wound infection model to study interspecies interactions. PLoS One 2011; 6: e27317. 24. Aparna MS,Yadav S. Biofilm: microbes and desease. Braz J Inf Dis 2008; 12: 526-30. 25. Gianfranco Donelli. Biofilm Microbici Multispecie, Laboratorio Biofilm Microbici 2010 IRCCS Fondazione Santa Lucia, Roma. 26. Donders GG, et al. Definition of a type of abnormal vaginal flora that is distinct from bacterial vaginosis: aerobic vaginitis. Br J Obstet Gynaecol 2002; 109: 34-43. 27. MacMillan A, et al. Disruption of urogenital biofilms by lattobacilli. Human Microbiology and Probiotic London Ontario 2011. 28. Saunders S, et al. Effect of Lactobacillus challenge on Gardnerella vaginalis biofilm. Colloids and Surfaces Biointerfaces, 2007; 55: 138–142. 29. Lasaro MA, et al. F1C fimbriae play an important role in biofilm formation and intestinal colonization by the Escherichia coli commensal strain Nissle 1917. Appl Environ Microbiol, 2009; 75: 246-51. 30. Martinez J, et al. Type 1 Pilus-mediated bacterial invasion of bladder epithelial cells. EMBO 2000; 19: 2803-2812. 31. Moreira CG, et al. Effect of Lactobacillus challenge on Gardnerella vaginalis biofilm. FEMS Microbiol Lett 2003; 226: 79-85. 32. Cadieux PA, et al. Lactobacillusby-products inhibit the growth and virulence of uropathogenic Escherichia Coli. J Phisiol Pharmacol 2009; 60: 13-8. 33. Atassi F, et al. Individual and co-operative roles of lactic acid and hydrogen peroxide in the killing activity of enteric strain Lactobacillus Johnsonii NCC933 and vaginal strain Lactobacillus gasseri KS120.1 against enteric, uropathogenic and vaginosis-associated pathogens. FEMS Microbiol Lett 2010; 304: 29-38. 34. Boris S, Barbes C. Role played by lactobacilli in controlling the population of vaginal pathogens. Microbes Infect. 2000;2(5):543–6. 35. Falagas ME, et al. Probiotics for prevention of recurrent vulvovaginal candidiasis: a review. J Antimicrob Chemother 2006; 58: 266–72. 36. Falagas ME, et al. Probiotics for the treatment of woman with bacterial vaginosis. Clin. Microbiol Infect 2007; 13: 657-64.

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